Signos y síntomas de la tifoidea:
La bacteria Salmonella typhi se propaga por alimentos, agua y bebidas contaminadas. Después de su ingestión, la bacteria se propaga desde el intestino hasta los ganglios linfáticos del intestino, hígado y bazo por la sangre donde se multiplica.La Salmonela puede infectar directamente la vesícula biliar a través del conducto hepático o extenderse a otras áreas del cuerpo por medio del torrente sanguíneo.Los síntomas iniciales son generalizados e incluyen: fiebre, malestar general y dolor abdominal.
A medida que avanza la enfermedad, la fiebre aumenta (por encima de 39,5° C/103° F) y la diarrea se hace más frecuente. Se observa debilidad, fatiga profunda, delirio, y aspecto de malestar general agudo de aparición repentina.Una erupción cutánea, característica solamente de la tifoidea y llamada "manchas rosas", aparece en la mayoría de los casos. Estas manchas son pequeñas, de color rojo oscuro, planas (0,64 cm - 1/4 ') y aparecen especialmente sobre el abdomen y tórax.
Típicamente, en los niños la enfermedad es menos grave y con menos complicaciones que en los adultos.Algunas personas pueden convertirse en portadores de la bacteria Salmonella typhi y continuar expulsando la bacteria en sus heces por años, diseminando la enfermedad, como es el caso de la fiebre "María tifoidea (Typhoid Mary )" en Nueva York hace más de cien años.Aunque la enfermedad es más común en países en desarrollo, menos de 400 casos se notifican en Estados Unidos cada año y la mayoría proviene de afuera.
Síntomas
• Dolor de cabeza severo
• Fiebre• Pérdida del apetito
• Incomodidad general, inquietud o malestar general
• Salpullido (manchas rosa) sobre la parte baja del tórax y abdomen durante la segunda semana de fiebre
• Sensibilidad abdominal
• Estreñimiento, después diarrea
• Heces con sangre
• Lentitud, inactividad, letargo
• Fatiga• Debilidad
• Sangrado nasal
• Escalofríos
• Delirio
• Confusión
• Agitación
• Alteraciones del estado de ánimo
• Dificultad para fijar la atención (falta de atención)
• AlucinacionesSignos y exámenes Volver al comienzo
• Aumento en el conteo de glóbulos blancos en la sangre
• Cultivo de sangre durante la primera semana de la fiebre: puede revelar la bacteria Salmonella typhi• Cultivo de heces
• Examen ELISA de la orina: puede indicar antígeno Vi específico para la bacteria
• Conteo de plaquetas: plaquetas bajas
• Estudio anticuerpo fluorescente: indica antígeno Vi, específico para tifoidea
BRUCELOSIS
Brucelosis, síntomas y característicasInvestigadores de la Universidad de Buenos Aires, el Conicet, el Instituto Leloir y la Universidad Nacional del Centro de la Provincia de Buenos Aires desarrollaron una vacuna efectiva contra la brucelosis. La brucelosis es una enfermedad endémica en la Argentina y otros países de América Latina, que afecta al ganado ovino, bovino, caprino y porcino. Sus características.
La brucelosis, también conocida como fiebre de Malta, es una enfermedad infecciosa que se presenta con episodios recurrentes de fiebre, debilidad, sudoración y dolores vagos. Es provocada por una bacteria llamada Brucella, que está en la sangre, las secreciones y la leche de vacas, cerdos, ovejas y cabras.
Las personas pueden infectarse al ingerir leche de vaca, de oveja o de cabra o sus derivados (manteca, quesos) que contengan microorganismos viables, es decir productos que hayan sido fabricados con leche sin pasteurizar. También se adquiere por contacto directo con animales infectados o sus productos (manejo de sangre, orina, descargas vaginales, fetos abortados y placentas de animales infectados), razón por lo que se considera que es una enfermedad profesional de veterinarios, carniceros, granjeros y ganaderos.
El período de incubación de la brucelosis, esto es el tiempo en que no se presentan todavía los síntomas, se establece entre entre 5 días y varios meses (con un promedio de 2 semanas). Los síntomas y signos más típicos son: fiebre y escalofríos, con elevación de la fiebre por las tardes; dolores muy intensos de cabeza; dolores musculares y articulares; estreñimiento; pérdida del apetito; pérdida de peso y debilidad. También se registra un aumento de tamaño del bazo, el hígado y los ganglios linfáticos.
La fiebre intermitente persiste durante unas semanas, y luego los síntomas cesan durante unos días, para aparecer más tarde, generalmente con picos febriles repetidos y remisiones durante meses. Agente causal de la brucelosis El agente causal de la brucelosis es la bacteria Brucella spp. Se trata de un cocobacilo, aeróbico, Gram negativo. Infecta en forma primaria a los animales. Se conocen 7 especies: Brucella melitensis, Brucella abortus, Brucella suis, Brucella neotomae, Brucella ovis, Brucella canis y Brucella maris.
Los reservorios naturales principales para las distintas especies son: vacunos (B. abortus), caprinos (B. melitensis), porcinos (B. suis), ovinos (B. ovis), caninos (B. canis), roedores (B. neotomae) y, además, la recientemente hallada en mamíferos marinos (B. maris). De las especies de Brucella caracterizadas hasta el presente, cinco son patógenas para el hombre. Brucella melitensis es la más virulenta, en tanto que B. abortus y B. canis producen infecciones leves. B. suis exhibe una virulencia intermedia..
SINTOMAS DE SALMONELLA
La salmonelosis es una infección de los intestinos grueso y delgado provocada por una bacteria llamada Salmonella. Se han identificado alrededor de 2,000 tipos de Salmonella. Sin embargo, sólo una pequeña cantidad de dichos tipos son el origen de los casos en los Estados Unidos. La fiebre tifoidea es el tipo de infección por Salmonella más grave.¿Quiénes contraen salmonelosis?Todas las personas pueden contraer salmonelosis, sin embargo, se presenta con mayor frecuencia en bebés y niños pequeños.
La salmonelosis se contrae mediante el consumo de alimentos o líquidos derivados de animales infectados o contaminados por las heces de un animal o persona infectada. La bacteria también se puede contagiar mediante el contacto directo con una persona o animal infectado. El contagio de persona a persona con frecuencia se produce en guarderías y en casas de reposo donde la higiene personal puede ser deficiente.
Los síntomas más comunes en personas infectadas por Salmonella son dolor de cabeza, dolor de estómago, diarrea, náuseas, vómitos y la mayoría de las veces fiebre. Las infecciones pueden entrar al torrente sanguíneo y ser muy graves en personas muy jóvenes y muy ancianas. No todas las personas infectadas con Salmonella se enferman, sin embargo, las personas que no presentan síntomas pueden excretar la bacteria y convertirse en un foco de infección para los demás.¿Con qué rapidez aparecen los síntomas luego de la infección?Por lo general, los síntomas aparecen en un plazo de 6 a 72 horas después de la infección.
La bacteria Salmonella comúnmente se encuentra en los alimentos como los huevos, productos derivados del huevo, carnes, productos derivados de la carne, aves, leche no pasteurizada y otros productos lácteos no pasteurizados como el queso. Se ha descubierto que la mayoría de los animales domésticos incluidos pollos, ganado vacuno, cerdos, patos, perros y gatos portan la bacteria. Los reptiles también pueden ser un foco de infección.¿Por cuánto tiempo una persona infectada puede portar la Salmonella?El período en que una persona puede contagiar la infección puede durar desde varios días hasta meses. Las personas que reciben antibióticos pueden portar la bacteria durante más tiempo que otras persona
martes, 23 de junio de 2009
Tarea #4 bitacora
La bitácora es el diario de trabajo y debe llevarse consigo al lugar de labores. Por lo tanto, es de suponer que se le dará un uso constante y, tal vez, agitado y rudo. En el laboratorio se coloca sobre la mesa de trabajo, por lo que está expuesta a que se derramen sobre ella reactivos puros o soluciones de ellos; si se trabaja con fuego, puede llegar a quemarse. Si se está en el campo, se expone a otros riesgos para su integridad, más aún si se encuentra trabajando en investigación sobre sistemas acuáticos o marinos (no siempre se cuenta con un buque oceanográfico).
practica #9 agrutinacion en sangre
Materiales:
• Placa escavada de porcelana
• Palillos de madera
• Tubo de ensaye con tapón morado con anticoagulante
• Torniquete
• Jeringa hipodérmica desechable de 5 ml
• Torundas alcolizadas y secas
• Papel para mesa
• Gradilla
• Reactivos tipificadores anti A, B y D
• Pipeta Pasteur con bulbo
Desarrollo:
Técnica de venopulsion, se extrae la sangre del pliegue del brazo en un volumen de 2.5 ml para transvasarla al tubo con tapón morado que contiene anticoagulante.
Una vez que se tiene la sangre fresca se puntea en la placa escavada utilizando una pipeta Pasteur con bulbo. Ya estando la sangre en la placa escavada se le aplica una gota de reactivo tipificadores A (amarillo) B (azul) D (transparente). Se toman pedacitos de madera, se mezclan cada uno de los puntos tipificadores y se esperan a observar la reacción de aglutinación la cual se presenta como si estuviera cortada la sangre en cualquiera de los 3 puntos, ya observada la aglutinación limpiamos equipo, entregamos para resguardarlo debidamente.
Publicado por operaciones basicas de laboratorio clinico en 14:53 0 comentarios
Etiquetas: Examen Tipo Sanguineo
• Placa escavada de porcelana
• Palillos de madera
• Tubo de ensaye con tapón morado con anticoagulante
• Torniquete
• Jeringa hipodérmica desechable de 5 ml
• Torundas alcolizadas y secas
• Papel para mesa
• Gradilla
• Reactivos tipificadores anti A, B y D
• Pipeta Pasteur con bulbo
Desarrollo:
Técnica de venopulsion, se extrae la sangre del pliegue del brazo en un volumen de 2.5 ml para transvasarla al tubo con tapón morado que contiene anticoagulante.
Una vez que se tiene la sangre fresca se puntea en la placa escavada utilizando una pipeta Pasteur con bulbo. Ya estando la sangre en la placa escavada se le aplica una gota de reactivo tipificadores A (amarillo) B (azul) D (transparente). Se toman pedacitos de madera, se mezclan cada uno de los puntos tipificadores y se esperan a observar la reacción de aglutinación la cual se presenta como si estuviera cortada la sangre en cualquiera de los 3 puntos, ya observada la aglutinación limpiamos equipo, entregamos para resguardarlo debidamente.
Publicado por operaciones basicas de laboratorio clinico en 14:53 0 comentarios
Etiquetas: Examen Tipo Sanguineo
pracrica #8 AGRUTINACION EN SUERO
Materiales:
· Placa escavada de porcelana
· Palillos de madera
· Tubo de ensaye con tapón morado con anticoagulante
· Torniquete
· Jeringa hipodérmica desechable de 5 ml
· Torundas alcolizadas y secas
· Papel para mesa
· Gradilla
· Reactivos tipificadores anti A, B y D
· Pipeta Pasteur con bulbo
Técnica de venopulsion, se extrae la sangre del pliegue del brazo en un volumen de 2.5 ml para transvasarla al tubo con tapón morado que contiene anticoagulante.
Una vez que se tiene la sangre fresca se puntea en la placa escavada utilizando una pipeta Pasteur con bulbo. Ya estando la sangre en la placa escavada se le aplica una gota de reactivo tipificadores A (amarillo) B (azul) D (transparente). Se toman pedacitos de madera, se mezclan cada uno de los puntos tipificadores y se esperan a observar la reacción de aglutinación la cual se presenta como si estuviera cortada la sangre en cualquiera de los 3 puntos, ya observada la aglutinación limpiamos equipo, entregamos para resguardarlo debidamente.
Publicado por operaciones basicas de laboratorio clinico en 14:53 0 comentarios
Etiquetas: Examen Tipo Sanguineo
Desarrollo:
Se utiliza venopulsion de sangre fresca en volumen de 25 ml, una vez obtenida la sangre se deposita en el tubo con tapón rojo pero antes en el inicio de extracción y vaciamiento al tubo se toma el tiempo de coagulación el cual es de 1 a2 minutos hasta 5 y en algunas ocasiones hasta 8 minutos.
Ya coagulada la sangre se retirara el tapón del tubo y se depositan todos los tubos en la centrifuga para centrifugar a 1500 revoluciones por minuto. Esto nos dará como resultado separación de paquetes.
Ya tenidos paq. Sangre y plasma se requiere un tubo de ensayo vacio para transvasar el plasma exclusivamente, se trabajara en el punto en laminilla de cristal, utilizando la pipeta Pasteur para puntear.
Ya obtenido el punteo de plasma en la laminilla de cristal, se le agrega una gota de reactivo febriclin teniendo el cuidado necesario del orden de los serotipos “OHAB, brucella y Proteus” ya obtenido el proceso y orden de serotipos utilizamos pequeños pedacitos de palillos de madera y utilizar de forma individual cada uno[no utilizar el mismo palillo.
Ya mezclada la solución plasmática y reactivo febriclin realizamos pequeños movimientos de rotación y traslación.
· Placa escavada de porcelana
· Palillos de madera
· Tubo de ensaye con tapón morado con anticoagulante
· Torniquete
· Jeringa hipodérmica desechable de 5 ml
· Torundas alcolizadas y secas
· Papel para mesa
· Gradilla
· Reactivos tipificadores anti A, B y D
· Pipeta Pasteur con bulbo
Técnica de venopulsion, se extrae la sangre del pliegue del brazo en un volumen de 2.5 ml para transvasarla al tubo con tapón morado que contiene anticoagulante.
Una vez que se tiene la sangre fresca se puntea en la placa escavada utilizando una pipeta Pasteur con bulbo. Ya estando la sangre en la placa escavada se le aplica una gota de reactivo tipificadores A (amarillo) B (azul) D (transparente). Se toman pedacitos de madera, se mezclan cada uno de los puntos tipificadores y se esperan a observar la reacción de aglutinación la cual se presenta como si estuviera cortada la sangre en cualquiera de los 3 puntos, ya observada la aglutinación limpiamos equipo, entregamos para resguardarlo debidamente.
Publicado por operaciones basicas de laboratorio clinico en 14:53 0 comentarios
Etiquetas: Examen Tipo Sanguineo
Desarrollo:
Se utiliza venopulsion de sangre fresca en volumen de 25 ml, una vez obtenida la sangre se deposita en el tubo con tapón rojo pero antes en el inicio de extracción y vaciamiento al tubo se toma el tiempo de coagulación el cual es de 1 a2 minutos hasta 5 y en algunas ocasiones hasta 8 minutos.
Ya coagulada la sangre se retirara el tapón del tubo y se depositan todos los tubos en la centrifuga para centrifugar a 1500 revoluciones por minuto. Esto nos dará como resultado separación de paquetes.
Ya tenidos paq. Sangre y plasma se requiere un tubo de ensayo vacio para transvasar el plasma exclusivamente, se trabajara en el punto en laminilla de cristal, utilizando la pipeta Pasteur para puntear.
Ya obtenido el punteo de plasma en la laminilla de cristal, se le agrega una gota de reactivo febriclin teniendo el cuidado necesario del orden de los serotipos “OHAB, brucella y Proteus” ya obtenido el proceso y orden de serotipos utilizamos pequeños pedacitos de palillos de madera y utilizar de forma individual cada uno[no utilizar el mismo palillo.
Ya mezclada la solución plasmática y reactivo febriclin realizamos pequeños movimientos de rotación y traslación.
pracrica #7 OBSERVACION MACROSCOPICA
PRACTICA No. 7 OBSERVACION MICROSCOPICA
Materiales:
- Aceite de inmersión - Frotis terminado
- Microscopio
- Papel cubre mesa
- Observación a objetivo 100x
OBJETIVO
Que el alumno observe la Tinian ya realizada
DESARRIOLLO
1- Ya terminado la tinción se puntea una gota de aceite de inmersión sobre el portaobjetos con tinción realizada
2- Se monta sobre el microscopio para hacer la observación
3- En la observación se puede ver pequeñas bolitas con forma obaloide y de color moradas y rojizas unas muy dispersas y otras muy juntas
Materiales:
- Aceite de inmersión - Frotis terminado
- Microscopio
- Papel cubre mesa
- Observación a objetivo 100x
OBJETIVO
Que el alumno observe la Tinian ya realizada
DESARRIOLLO
1- Ya terminado la tinción se puntea una gota de aceite de inmersión sobre el portaobjetos con tinción realizada
2- Se monta sobre el microscopio para hacer la observación
3- En la observación se puede ver pequeñas bolitas con forma obaloide y de color moradas y rojizas unas muy dispersas y otras muy juntas
practica # 6 TINCION DE GRAM
PRACTICA No. 6 TINCION
MATERIALES:
1. PORTA OBJETOS CON FROTIS TERMINADO
2. MECHEROS DE BUNZEN
3. PAPEL PARA BESTIR MESA
4. ASA DE PLATINO
5. VASO DE PRECIPITADO CON AGUA DESTILADA
6. LUGOL
7. ALCOHOL
8. CRISTAL VIOLETA
DESARROLLO
• Agregar azul violeta (cristal violeta o violeta de genciana) y esperar 1 min. Este tinte (al final del procedimiento) dejará de color morado solo a las bacterias Gram positivas.
• Enjuagar con agua.
• Agregar lugol y esperar 30 segundos
• Enjuagar con agua.
• Agregar alcohol acetona y esperar 15 s
• Enjuagar con agua.
• Agregar safranina y esperar 1 min. Este tinte dejará de color rosado las bacterias Gram negativas.
• Enjuagar con agua.
Para observar al microscopio óptico es conveniente hacerlo a 100x con aceite de inmersión
Tinción:
Con violeta cristal o violeta de genciana, utilizando una cantidad suficiente de dicho colorante sobre la muestra, como para lograr cubrirla por completo. Se deja actuar al colorante por 1 minuto. Esta tinción de 1 minuto está dada para trabajar a una temperatura ambiente de 25 ºC.
Enjuague:
Al transcurrir el minuto, se debe enjuagar la lámina conteniendo la muestra con agua corriente. Para realizar el lavado, se debe tener en cuenta que el chorro de agua NO debe caer directamente sobre la muestra, ésta debe caer sobre la parte superior de la lámina que no contiene muestra. El chorro debe ser un chorro delgado, aproximadamente de medio a un centímetro de espesor. También el enjuague se debe realizar poniendo la lámina en posición inclinada hacia abajo... Una vez enjuagado el portaobjetos, se aplica como mordiente yodo o lugol durante 1 minuto más.
Decoloración:
Pasado el minuto de haber actuado el mordiente, el frotis se decolora con etanol al 75 %, etanol al 95 %, acetona o alcohol-acetona, hasta que ya no escurra más líquido azul. Para esto se utiliza el gotero del frasco del decolorante. Se van añadiendo cantidades suficientes del decolorante, hasta lograr que éste salga totalmente transparente, es decir, hasta que ya no escurra más líquido azul
Lavado y secado:
Lavar con agua para quitar los residuos de decolorante y esperar que seque la lámina al aire libre o con la ayuda de la llama de un mechero de la forma anteriormente descrita.
Ya terminado el proceso de tinción se deja secar para agregar aceite de inmersión y así poder observar lo obtenido
MATERIALES:
1. PORTA OBJETOS CON FROTIS TERMINADO
2. MECHEROS DE BUNZEN
3. PAPEL PARA BESTIR MESA
4. ASA DE PLATINO
5. VASO DE PRECIPITADO CON AGUA DESTILADA
6. LUGOL
7. ALCOHOL
8. CRISTAL VIOLETA
DESARROLLO
• Agregar azul violeta (cristal violeta o violeta de genciana) y esperar 1 min. Este tinte (al final del procedimiento) dejará de color morado solo a las bacterias Gram positivas.
• Enjuagar con agua.
• Agregar lugol y esperar 30 segundos
• Enjuagar con agua.
• Agregar alcohol acetona y esperar 15 s
• Enjuagar con agua.
• Agregar safranina y esperar 1 min. Este tinte dejará de color rosado las bacterias Gram negativas.
• Enjuagar con agua.
Para observar al microscopio óptico es conveniente hacerlo a 100x con aceite de inmersión
Tinción:
Con violeta cristal o violeta de genciana, utilizando una cantidad suficiente de dicho colorante sobre la muestra, como para lograr cubrirla por completo. Se deja actuar al colorante por 1 minuto. Esta tinción de 1 minuto está dada para trabajar a una temperatura ambiente de 25 ºC.
Enjuague:
Al transcurrir el minuto, se debe enjuagar la lámina conteniendo la muestra con agua corriente. Para realizar el lavado, se debe tener en cuenta que el chorro de agua NO debe caer directamente sobre la muestra, ésta debe caer sobre la parte superior de la lámina que no contiene muestra. El chorro debe ser un chorro delgado, aproximadamente de medio a un centímetro de espesor. También el enjuague se debe realizar poniendo la lámina en posición inclinada hacia abajo... Una vez enjuagado el portaobjetos, se aplica como mordiente yodo o lugol durante 1 minuto más.
Decoloración:
Pasado el minuto de haber actuado el mordiente, el frotis se decolora con etanol al 75 %, etanol al 95 %, acetona o alcohol-acetona, hasta que ya no escurra más líquido azul. Para esto se utiliza el gotero del frasco del decolorante. Se van añadiendo cantidades suficientes del decolorante, hasta lograr que éste salga totalmente transparente, es decir, hasta que ya no escurra más líquido azul
Lavado y secado:
Lavar con agua para quitar los residuos de decolorante y esperar que seque la lámina al aire libre o con la ayuda de la llama de un mechero de la forma anteriormente descrita.
Ya terminado el proceso de tinción se deja secar para agregar aceite de inmersión y así poder observar lo obtenido
domingo, 24 de mayo de 2009
Practica No. 5 ELAVORACION DE UN FROTIS
ELAVORACION DE UN FROTIS
El alumno de laboratorio de análisis clínicos debe realizar un frotis con el producto obtenido en las cajas petri, el cual debe ser fino y delgado pára poder realizar el proceso de tincion.
MATERIALES:
1 Cajas petri con medio de cultivo y microorganismos en desarrollo
2 Asa bacteriológica de platino
3 Mecheros de bunsen
4 Vaso de precipitado de 50ml
5 vaso de precipitado 25ml de agua destilada
6 porta objetos
DESARROLLO
1 con el asa bacteriológica se va a realizar un frotis en un portaobjetos de cristal.
2 se toma el asa bacteriológica se pone en la flama del mechero dejándola al rojo vivo para que se esterilicé, se retira del fuego, se toma una pequeña gota de agua destilada, con ella misma se extrae una pequeña muestra del material bacteriológico crecido en las cajas petri.
Unas ves teniendo este material en el asa se acude a depositarlo en el portaobjetos en su parte central.
Desplazando de izquierda a derecha el material bacteriológico hasta que quede una película delgada, una ves teniéndola verificamos con el instructor si ya esta lista para poder fijarla al calor.
Ya realizado el frotis se fija de forma directa, se toma el portaobjetos en sus partes alo largo para su transporte.
Se toma el portaobjetos de forma lateral para poderlo pasar encima de la llama nunca dejar en forma directa en la flama.
Una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción.
El alumno de laboratorio de análisis clínicos debe realizar un frotis con el producto obtenido en las cajas petri, el cual debe ser fino y delgado pára poder realizar el proceso de tincion.
MATERIALES:
1 Cajas petri con medio de cultivo y microorganismos en desarrollo
2 Asa bacteriológica de platino
3 Mecheros de bunsen
4 Vaso de precipitado de 50ml
5 vaso de precipitado 25ml de agua destilada
6 porta objetos
DESARROLLO
1 con el asa bacteriológica se va a realizar un frotis en un portaobjetos de cristal.
2 se toma el asa bacteriológica se pone en la flama del mechero dejándola al rojo vivo para que se esterilicé, se retira del fuego, se toma una pequeña gota de agua destilada, con ella misma se extrae una pequeña muestra del material bacteriológico crecido en las cajas petri.
Unas ves teniendo este material en el asa se acude a depositarlo en el portaobjetos en su parte central.
Desplazando de izquierda a derecha el material bacteriológico hasta que quede una película delgada, una ves teniéndola verificamos con el instructor si ya esta lista para poder fijarla al calor.
Ya realizado el frotis se fija de forma directa, se toma el portaobjetos en sus partes alo largo para su transporte.
Se toma el portaobjetos de forma lateral para poderlo pasar encima de la llama nunca dejar en forma directa en la flama.
Una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción.
Practica No. 4 OBSERVACION MACROSCOPICA
OBSERVACION MACROSCOPICA
El alumno realiza observacion macroscopica de las cajas petri anteriormente sembradas en las que se presenta desarrollo o crecimiento de colonias bacterianas.
MATERIALES
1 cajas petri ya con medio de cultivo elaborado
2 asa bacteriana
3 2 mecheros de bunsen
4 baso de presipitado con 25ml de agua deztilada
5 vernier o pie de rey
6 3 torundas de algodón seco
7 3torundas de algodón alcoholizadas
DESARROLLO
1 las cajas pitri ya sembradas se deposita las cajas petri en mesa de laboratorio para su observación, previamente la mesa vestida de papel blanco
2 observamos de forma microscópica los crecimientos de microorganismos en medio del cultivo anotando colores, olores, dimensión desde la mas pequeña hasta la mas grande, para ello necesitamos abrir la caja en nuestro campo de esterilización a base de los 2 mecheros
3para poder medir las colonias de microorganismos utilizaremos una herramienta de medición denominada vernier, medimos y anotamos con su prespectivo grafico
4 cada grafico debe llevar el pie de grafico o pie de foto donde nos indica la información de lo que estamos plasmando.
El alumno realiza observacion macroscopica de las cajas petri anteriormente sembradas en las que se presenta desarrollo o crecimiento de colonias bacterianas.
MATERIALES
1 cajas petri ya con medio de cultivo elaborado
2 asa bacteriana
3 2 mecheros de bunsen
4 baso de presipitado con 25ml de agua deztilada
5 vernier o pie de rey
6 3 torundas de algodón seco
7 3torundas de algodón alcoholizadas
DESARROLLO
1 las cajas pitri ya sembradas se deposita las cajas petri en mesa de laboratorio para su observación, previamente la mesa vestida de papel blanco
2 observamos de forma microscópica los crecimientos de microorganismos en medio del cultivo anotando colores, olores, dimensión desde la mas pequeña hasta la mas grande, para ello necesitamos abrir la caja en nuestro campo de esterilización a base de los 2 mecheros
3para poder medir las colonias de microorganismos utilizaremos una herramienta de medición denominada vernier, medimos y anotamos con su prespectivo grafico
4 cada grafico debe llevar el pie de grafico o pie de foto donde nos indica la información de lo que estamos plasmando.
Practica No.3 SIEMBRA
SIEMBRA EN CAJAS PETRI EN FORMA DE ESTRIAS 
Materiales
1 cajas petri con medio de cultivo elaborado
2 muestras de deshecho
3 asa bacteriologica
4 mecheros de bunsen
5 vasos de precipitado con agua destilada con 25ml
6 papel para cubrir mesa de laboratorio
7 papel secante
8 torundas de algodón
9 masquintape para etiquetar cajas petri alcoholizadas
Muestras de producto de desecho
1 toma de muestra (2.5ml de sangre) se deposita en el tubo de tapón rojo 2 orina (6 botes para orina)
1 portaobjeto
3 muestra de cavidad oral en espacios interdentales (hisopos)
4 agua preparada en la calle (aguas frescas)
5 raspado interdigital con portaobjetos.
Desarrollo:
Se realiza el proceso de siembra por estrías en medio de cultivo que contiene las cajas petri siendo este sólido. Se utiliza el asa bacteriológica, pasándola por el mechero y al ponerse al rojo vivo esta queda esterilizada.
Una ve esterilizada el asa se toma una pequeña gota de agua destilada y se pasa a tomar la muestra de desecho que se pretende observar esto es en 2 materiales de preferencia sólidos.
Para los materiales líquidos solo se esteriliza, se toma el producto y se aplica en la caja petri realizando una siembra en forma de estrías de los 7 tipos mostrados en el pizarrón.
Para poder sembrar una muestra de caveado de oral de espacio interdental se requiere un hisopo esterilizado, tomando la muestra del paciente en su cavidad oral y se aplica en caja petri en forma de estriado. Dentro de los 7 modelos de siembra, uno de ellos requiere varilla de cristal para poder sembrar el producto el cual séle da el nombre de siembra de dispersión.
Las cajas petri sembradas se deben depositar en la estufa de incubación a 37 grados centígrados. Durante el proceso practico debemos realizar nuestra bitácora de actividades, elaborando en 1 hoja cuadriculada para asignar cada una de la actividades enumeradas llevando secuencia en tiempos y en la cual debemos anotar fechas de trabajo realizado
Materiales
1 cajas petri con medio de cultivo elaborado
2 muestras de deshecho
3 asa bacteriologica
4 mecheros de bunsen
5 vasos de precipitado con agua destilada con 25ml
6 papel para cubrir mesa de laboratorio
7 papel secante
8 torundas de algodón
9 masquintape para etiquetar cajas petri alcoholizadas
Muestras de producto de desecho
1 toma de muestra (2.5ml de sangre) se deposita en el tubo de tapón rojo 2 orina (6 botes para orina)
1 portaobjeto
3 muestra de cavidad oral en espacios interdentales (hisopos)
4 agua preparada en la calle (aguas frescas)
5 raspado interdigital con portaobjetos.
Desarrollo:
Se realiza el proceso de siembra por estrías en medio de cultivo que contiene las cajas petri siendo este sólido. Se utiliza el asa bacteriológica, pasándola por el mechero y al ponerse al rojo vivo esta queda esterilizada.
Una ve esterilizada el asa se toma una pequeña gota de agua destilada y se pasa a tomar la muestra de desecho que se pretende observar esto es en 2 materiales de preferencia sólidos.
Para los materiales líquidos solo se esteriliza, se toma el producto y se aplica en la caja petri realizando una siembra en forma de estrías de los 7 tipos mostrados en el pizarrón.
Para poder sembrar una muestra de caveado de oral de espacio interdental se requiere un hisopo esterilizado, tomando la muestra del paciente en su cavidad oral y se aplica en caja petri en forma de estriado. Dentro de los 7 modelos de siembra, uno de ellos requiere varilla de cristal para poder sembrar el producto el cual séle da el nombre de siembra de dispersión.
Las cajas petri sembradas se deben depositar en la estufa de incubación a 37 grados centígrados. Durante el proceso practico debemos realizar nuestra bitácora de actividades, elaborando en 1 hoja cuadriculada para asignar cada una de la actividades enumeradas llevando secuencia en tiempos y en la cual debemos anotar fechas de trabajo realizado
Practica No.2 TECNICA DE ESTERILIZACION
TECNICA DE EZTERILIZACION
Se esteriliza el producto a 15 libras de presión y una temperatura de 120 grados centígrados durante 20 minutos.
Una vez terminada la esterilización se deja enfriar, el producto se libera de la autoclave, se entrega a las mesas y se hará el vaciado en cajas petri.
Para el vaciado en cajas petri se requiere un campo de esterilización en la mesa con 2 mecheros para que el producto este en el centro del campo de esterilización del mechero.
11 Se utiliza el vaso de precipitado de 250 ml el cual se pasara en forma breve por el fuego, para que este esterilizado (se pasara con la boquilla abierta) séle vierte el producto con la cantidad requerida y se vacía el producto con la cantidad requerida y se vacía ala caja petri, dejándola abierta con su tapa sobrepuesta asta que se enfríe, esto se hará las veces necesarias en nado de cajas.
Ya estando sólido el medio de cultivo se tapa, se etiqueta y se deposita en el enfriador, con el nombre de la mesa, grupo, datos del medio de cultivo.
Se esteriliza el producto a 15 libras de presión y una temperatura de 120 grados centígrados durante 20 minutos.
Una vez terminada la esterilización se deja enfriar, el producto se libera de la autoclave, se entrega a las mesas y se hará el vaciado en cajas petri.
Para el vaciado en cajas petri se requiere un campo de esterilización en la mesa con 2 mecheros para que el producto este en el centro del campo de esterilización del mechero.
11 Se utiliza el vaso de precipitado de 250 ml el cual se pasara en forma breve por el fuego, para que este esterilizado (se pasara con la boquilla abierta) séle vierte el producto con la cantidad requerida y se vacía el producto con la cantidad requerida y se vacía ala caja petri, dejándola abierta con su tapa sobrepuesta asta que se enfríe, esto se hará las veces necesarias en nado de cajas.
Ya estando sólido el medio de cultivo se tapa, se etiqueta y se deposita en el enfriador, con el nombre de la mesa, grupo, datos del medio de cultivo.
practica No.1 MEDIO DE CULTIVO
Practica No. 1 Medio de Cultivo. (Reactivo)
1. objetivo realizado por el alumno
2. una introducción.
3. índice.
4. materiales.
5. instrucciones.
1) Llegar puntualmente al laboratorio.
2) Disponer de equipo de bioseguridad para realizar trabajo de laboratorio (5 min.)
3) Solicitar vale para materiales de laboratorio y vestir la mesa de laboratorio con papel color blanco para poder obtener un campo estéril un alumno de los que están dentro del laboratorio para realizar la practica, debe de anotar en el pizarrón los materiales que se utilizaran en la misma.
4) Materiales para medio de cultivo.
cristalería:
matraz erlenmeyer 250 ml.
vaso de precipitado 250 ml.
probeta graduada 100 ml.
vaso de precipitado 50 ml.
varilla de cristal o agitador.
vidrio de reloj.
pesos y medidas:
balanza granataría.
materiales de apoyo:
espátula.
utilización de técnica de esterilización autoclave
mechero de bunsen o káiser.
torundas de algodón.
papel secante color café.
cinta masquen tape café.
y en reactivos medio de cultivo.
5) Indicaciones para desarrollo del medio de cultivo.
pesar el polvo del medio de cultivo utilizado en el vidrio de reloj, realizando regla de tres. Solicitar agua destilada dependiendo la cantidad de producto que se valla a ocupar en cajas petri, siendo un total de 7 cajas petri por mesa; en el caso de nuestra mesa es necesario que sean 8 cajas petri.
una ves pesado el polvo del medio de cultivo se mezclaran el contenido de agua que se tiene en el vaso de precipitado.
para poder mezclar y que no queden grumos se utiliza la varilla de cristal para agitar conforme a las manecillas de reloj hasta que se disuelva el polvo en agua.
una vez que ya tenemos la mezcla hecha dejamos reposar el producto de acuerdo a las indicaciones que contiene el deposito de medio de cultivo.
NOTA: las indicaciones del medio de cultivo que contiene en la etiqueta. Del deposito se deben de transcribir para conocer bien los datos.
6) Se le da el nombre de rehidratación al polvo con agua y observando las indicaciones dadas se tomara el porcentaje requerido de polvo para la mezcla con el agua que soliciten de acuerdo a las cajas petri que se llevan a preparar.
después de que reposo del producto se le da movimientos en rotación, juego de muñeca exponiéndolo al fuego del mechero, estos movimientos darán como resultado una ebullición (hervor). Y se le dará desde el momento que inicia la ebullición un minuto de tiempo para que quede listo nuestro medio de cultivo en forma liquida.
se debe tener cuidado con la ebullición del producto en el matraz erlenmeyer ya que este puede rebasar sus limites y ocasionar un accidente por quemaduras.
una ves terminado el proceso de ebullición del medio de cultivo se deja enfriar, se tamponea con torundas de algodón, se cubre con cinta masquen tape y se etiqueta con registro del medio de cultivo, núm. mesa y fecha de elaboración así como la hora en que se realizo.
7) Todos los integrantes se ponen de acuerdo para el proceso de esterilización y se depositaran en la autoclave. Que ya previamente se ha preparado al principio de la práctica.
Técnica de esterilización Autoclave (calor húmedo).
se esterilizara el producto a 15 libras de presión y una temperatura de 120 °C durante 20 min.
Una ves terminada la esterilización se deja enfriar, se libera del autoclave, se entrega a las mesas y se lleva a cabo el vaciado en las cajas petri.
Para el baseado en cajas petri se requiere de un campo de esterilización en la mesa con 2 mecheros para que el producto, se libere del autoclave se entrega en las mesas y se llevara acabo el baseado en las cajas petri.
5 Se utiliza baso de precipitado de 50 ml, el cual se pasara en forma breve por el fuego en la boquilla del baso para que este, este esterilizado, se le vierte el producto en la cantidad requerida y se bacía en la caja petri, dejándola abierta con su tapa, sobre encimada, asta que enfrié. Estos se hará todas las veces necesarias del llenado de cajas.
Ya estando solido el medio de cultivo se tapa, se etiqueta y se deposita en el enfriador
1. objetivo realizado por el alumno
2. una introducción.
3. índice.
4. materiales.
5. instrucciones.
1) Llegar puntualmente al laboratorio.
2) Disponer de equipo de bioseguridad para realizar trabajo de laboratorio (5 min.)
3) Solicitar vale para materiales de laboratorio y vestir la mesa de laboratorio con papel color blanco para poder obtener un campo estéril un alumno de los que están dentro del laboratorio para realizar la practica, debe de anotar en el pizarrón los materiales que se utilizaran en la misma.
4) Materiales para medio de cultivo.
cristalería:
matraz erlenmeyer 250 ml.
vaso de precipitado 250 ml.
probeta graduada 100 ml.
vaso de precipitado 50 ml.
varilla de cristal o agitador.
vidrio de reloj.
pesos y medidas:
balanza granataría.
materiales de apoyo:
espátula.
utilización de técnica de esterilización autoclave
mechero de bunsen o káiser.
torundas de algodón.
papel secante color café.
cinta masquen tape café.
y en reactivos medio de cultivo.
5) Indicaciones para desarrollo del medio de cultivo.
pesar el polvo del medio de cultivo utilizado en el vidrio de reloj, realizando regla de tres. Solicitar agua destilada dependiendo la cantidad de producto que se valla a ocupar en cajas petri, siendo un total de 7 cajas petri por mesa; en el caso de nuestra mesa es necesario que sean 8 cajas petri.
una ves pesado el polvo del medio de cultivo se mezclaran el contenido de agua que se tiene en el vaso de precipitado.
para poder mezclar y que no queden grumos se utiliza la varilla de cristal para agitar conforme a las manecillas de reloj hasta que se disuelva el polvo en agua.
una vez que ya tenemos la mezcla hecha dejamos reposar el producto de acuerdo a las indicaciones que contiene el deposito de medio de cultivo.
NOTA: las indicaciones del medio de cultivo que contiene en la etiqueta. Del deposito se deben de transcribir para conocer bien los datos.
6) Se le da el nombre de rehidratación al polvo con agua y observando las indicaciones dadas se tomara el porcentaje requerido de polvo para la mezcla con el agua que soliciten de acuerdo a las cajas petri que se llevan a preparar.
después de que reposo del producto se le da movimientos en rotación, juego de muñeca exponiéndolo al fuego del mechero, estos movimientos darán como resultado una ebullición (hervor). Y se le dará desde el momento que inicia la ebullición un minuto de tiempo para que quede listo nuestro medio de cultivo en forma liquida.
se debe tener cuidado con la ebullición del producto en el matraz erlenmeyer ya que este puede rebasar sus limites y ocasionar un accidente por quemaduras.
una ves terminado el proceso de ebullición del medio de cultivo se deja enfriar, se tamponea con torundas de algodón, se cubre con cinta masquen tape y se etiqueta con registro del medio de cultivo, núm. mesa y fecha de elaboración así como la hora en que se realizo.
7) Todos los integrantes se ponen de acuerdo para el proceso de esterilización y se depositaran en la autoclave. Que ya previamente se ha preparado al principio de la práctica.
Técnica de esterilización Autoclave (calor húmedo).
se esterilizara el producto a 15 libras de presión y una temperatura de 120 °C durante 20 min.
Una ves terminada la esterilización se deja enfriar, se libera del autoclave, se entrega a las mesas y se lleva a cabo el vaciado en las cajas petri.
Para el baseado en cajas petri se requiere de un campo de esterilización en la mesa con 2 mecheros para que el producto, se libere del autoclave se entrega en las mesas y se llevara acabo el baseado en las cajas petri.
5 Se utiliza baso de precipitado de 50 ml, el cual se pasara en forma breve por el fuego en la boquilla del baso para que este, este esterilizado, se le vierte el producto en la cantidad requerida y se bacía en la caja petri, dejándola abierta con su tapa, sobre encimada, asta que enfrié. Estos se hará todas las veces necesarias del llenado de cajas.
Ya estando solido el medio de cultivo se tapa, se etiqueta y se deposita en el enfriador
ENLISTADO DE PRACTICAS
Practica-1 Operar equipo y material de laboratorio así como elaborar medios de cultivo.
Practica-2 Elaborar medio de cultivo.
Practica-3 Esterilización d medio de cultivo.
Práctica-4 Siembras en estría de medio de cultivo.
Practica-5 Observación de desarrollo de microorganismos en medio de cultivo, lectura de colonias.
Practica-6 Protis para tinción.
Practica-7 Tinción de Gram
Practica-8 Observación microscópica en objetivos 100X con aceite de inmersión
Practica-9 Prueba de reacciones febriles para prueba de aglutinación en serología tubo son anti coagulo (rojo)
Practica-10 Prueba de aglutinación en sangre fresca utilizando tuvo coagulante (morado)
Practica-2 Elaborar medio de cultivo.
Practica-3 Esterilización d medio de cultivo.
Práctica-4 Siembras en estría de medio de cultivo.
Practica-5 Observación de desarrollo de microorganismos en medio de cultivo, lectura de colonias.
Practica-6 Protis para tinción.
Practica-7 Tinción de Gram
Practica-8 Observación microscópica en objetivos 100X con aceite de inmersión
Practica-9 Prueba de reacciones febriles para prueba de aglutinación en serología tubo son anti coagulo (rojo)
Practica-10 Prueba de aglutinación en sangre fresca utilizando tuvo coagulante (morado)
viernes, 22 de mayo de 2009
TAREA #7 COCOS Y BACILLUS
COCOS
Los cocos piógenos (productoras de pus) son bacterias esféricas que causan diferentes infecciones supurativas Incluye a cocos Gram-positivos: Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes y Streptococcus pneumoniae, y a los cocos Gram-negativas Neisseria gonorrhoeae y N. meningitidis. Estas bacterias son patogenas y se estima que producen un tercio de las infecciones humanas, entre ellas infecciones en la garganta, neumonía, enfermedades de la piel, shock septicémicos, meningitis, gonorrea, envenenamiento de alimentos.
Staphylococcus aureus es una de las bacterias mas exitosas con un amplio rango de virulencia lo que le permite ser el agente de un amplio número de infecciones y a menudo esta presente en la flora normal humana (piel, mucosa nasal y tracto genital ), esto asegura su transmisibilidad de un individuo a otro. En términos de filogenia fisiología y genética, estos géneros de bacterias están poco relacionados entre ellos. Sin embargo comparten una ecología común, como patógenos humanos. El pus es el resultante de la batalla entre los fagocitos (neutrófilos) y las bacterias invasoras. A medida que las bacterias son ingeridas y muertas por los fagocitos los mismos eventualmente se lisan y liberan su contenido que, junto a los productos de digestión de las bacterias, constituyen el principal material del pus. Por otra parte como una defensa contra los fagocitos los estrepto y estafilococos producen toxinas que matan los neutrófilos antes de que ingieran las bacterias contribuyendo al aumento del pus.
Dos especies de Staphylococcus viven asociadas a los humanos: Staphylococcus epidermidis habitante normal de la piel y membranas mucosas y Staphylococcus aureus con una localización variada, aunque generalmente se lo encuentra en mucosa nasal. S. epidermidis raramente es patógeno y probablemente beneficia a su huésped produciendo ácidos y retardando de este modo el crecimiento de hongos dermatofitos. S. aureus siempre posee el potencial de causar enfermedades y por lo tanto se lo considera patógeno. Diferentes cepas de S. aureus difieren en el rango de enfermedades que causan incluyéndose entre ellas forúnculos y granos, infecciones de heridas, neumonía, osteomielitis, septicemia, intoxicación alimentaria, y shock tóxico. S. aureus encabeza el ranking de productores de infecciones intrahospitalarias entre las bacterias Gram-positivas.
También es notoria su resistencia a la penicilina y otros antibióticos.
Streptococcus pyogenes, más especificamente Streptococos del grupo A beta hemolíticos, al igual que S. aureus, son la causa de un conjunto de enfermedades supurativas y toxigénicas y para completar algunas enfermedades autoinmunes y alérgicas.
S. pyogenes raramente se encuentra como flora normal (<1%),>fiebre reumática y la glomérulo nefritis (las así llamadas secuelas post-estreptococcicas). A diferencia de los estafilococos no han desarrollado una resistencia generalizada a la penicilina y a los antibióticos beta lactámicos, por lo tanto los beta lactámicos SON LA DROGA DE ELECCIÓN para el tratamiento de las enfermedades estreptocócicas agudas.
Streptococcus pneumoniae es la causa mas frecuente de neumonía en humanos. También es causa frecuente de otitis media y meningitis. Las bacterias colonizan la nasofaringe y desde allí acceden a pulmones o trompa de Eustaquio. Aquellas que poseen cápsulas pueden impedir la fagocitosis por los macrófagos alveolares por lo tanto las cepas capsuladas pueden invadir los pulmones y son VIRULENTAS mientras que las no capsuladas que son rápidamente fagocitadas son no virulentas.
Bacillus.
El género Bacillus está compuesto por bacilos grampositivos grandes caracterizados por su capacidad para producir endosporas. El género incluye microorganismos aerobios estrictos y anaerobios facultativos. Bacillus anthracis es causante de enfermedad en el ser humano. Muchas otras especies están distribuidas en la naturaleza y se hallan en la mayor parte de las muestras de suelos, agua y polvo. Ciertos miembros de dicho género han adquirido importancia como productores de antibióticos. (1)
Bacillus anthracis.
El carbunco (enfermedad de los animales herbívoros, ovinos y bovinos, equinos, porcinos y caprinos) es causado por el B. anthacis, un bacilo grampositivo aerobio y formador de esporas. Es un bacilo recto que mide de 3 a 5 micras de largo y de 1 a 1.2 micras de ancho, es inmóvil. Están encapsulados durante la proliferación en el animal infectado.
Características de su cultivo. Proliferan bien en placas con agar sangre. La proliferación máxima se obtiene con un pH de 7-7.4 en condiciones aerobias, pero se produce desarrollo en ausencia de oxígeno. Identificación de laboratorio. Ni los aspectos morfológicos ni las características de cultivo habituales permiten diferenciar al B. anthracis de las cepas inmóviles de B. cereus, el microorganismo con el que más fácilmente se confunde.
Sin embargo, las cepas virulentas de B. anthracis son los únicos microorganismos que producen colonias rugosas cuando proliferan en ausencia de un mayor nivel de CO2 y colonias mucoides cuando proliferan en un medio con bicarbonato de sodio en una atmósfera con un 5% de CO2. Los
seres humanos se infectan de una de tres formas:
1. La vía cutánea. Los microorganismos acceden a través de pequeñas abrasiones o cortes y se multiplican.
2. Inhalación. Los microorganismos son inhalados, se multiplican en los pulmones y son barridos hacia los ganglios linfáticos hiliares de drenaje, donde se rpoduce una necrosis hemorrágica.
3. Ingestión. Rara vez los microorganismos son ingeridos en carne infectada, con ella resultante invasión y ulceración de la mucosa gastrointestinal.
FICHA BIBLIOGRAFICA
Los cocos piógenos (productoras de pus) son bacterias esféricas que causan diferentes infecciones supurativas Incluye a cocos Gram-positivos: Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes y Streptococcus pneumoniae, y a los cocos Gram-negativas Neisseria gonorrhoeae y N. meningitidis. Estas bacterias son patogenas y se estima que producen un tercio de las infecciones humanas, entre ellas infecciones en la garganta, neumonía, enfermedades de la piel, shock septicémicos, meningitis, gonorrea, envenenamiento de alimentos.
Staphylococcus aureus es una de las bacterias mas exitosas con un amplio rango de virulencia lo que le permite ser el agente de un amplio número de infecciones y a menudo esta presente en la flora normal humana (piel, mucosa nasal y tracto genital ), esto asegura su transmisibilidad de un individuo a otro. En términos de filogenia fisiología y genética, estos géneros de bacterias están poco relacionados entre ellos. Sin embargo comparten una ecología común, como patógenos humanos. El pus es el resultante de la batalla entre los fagocitos (neutrófilos) y las bacterias invasoras. A medida que las bacterias son ingeridas y muertas por los fagocitos los mismos eventualmente se lisan y liberan su contenido que, junto a los productos de digestión de las bacterias, constituyen el principal material del pus. Por otra parte como una defensa contra los fagocitos los estrepto y estafilococos producen toxinas que matan los neutrófilos antes de que ingieran las bacterias contribuyendo al aumento del pus.
Dos especies de Staphylococcus viven asociadas a los humanos: Staphylococcus epidermidis habitante normal de la piel y membranas mucosas y Staphylococcus aureus con una localización variada, aunque generalmente se lo encuentra en mucosa nasal. S. epidermidis raramente es patógeno y probablemente beneficia a su huésped produciendo ácidos y retardando de este modo el crecimiento de hongos dermatofitos. S. aureus siempre posee el potencial de causar enfermedades y por lo tanto se lo considera patógeno. Diferentes cepas de S. aureus difieren en el rango de enfermedades que causan incluyéndose entre ellas forúnculos y granos, infecciones de heridas, neumonía, osteomielitis, septicemia, intoxicación alimentaria, y shock tóxico. S. aureus encabeza el ranking de productores de infecciones intrahospitalarias entre las bacterias Gram-positivas.
También es notoria su resistencia a la penicilina y otros antibióticos.
Streptococcus pyogenes, más especificamente Streptococos del grupo A beta hemolíticos, al igual que S. aureus, son la causa de un conjunto de enfermedades supurativas y toxigénicas y para completar algunas enfermedades autoinmunes y alérgicas.
S. pyogenes raramente se encuentra como flora normal (<1%),>fiebre reumática y la glomérulo nefritis (las así llamadas secuelas post-estreptococcicas). A diferencia de los estafilococos no han desarrollado una resistencia generalizada a la penicilina y a los antibióticos beta lactámicos, por lo tanto los beta lactámicos SON LA DROGA DE ELECCIÓN para el tratamiento de las enfermedades estreptocócicas agudas.
Streptococcus pneumoniae es la causa mas frecuente de neumonía en humanos. También es causa frecuente de otitis media y meningitis. Las bacterias colonizan la nasofaringe y desde allí acceden a pulmones o trompa de Eustaquio. Aquellas que poseen cápsulas pueden impedir la fagocitosis por los macrófagos alveolares por lo tanto las cepas capsuladas pueden invadir los pulmones y son VIRULENTAS mientras que las no capsuladas que son rápidamente fagocitadas son no virulentas.
Bacillus.
El género Bacillus está compuesto por bacilos grampositivos grandes caracterizados por su capacidad para producir endosporas. El género incluye microorganismos aerobios estrictos y anaerobios facultativos. Bacillus anthracis es causante de enfermedad en el ser humano. Muchas otras especies están distribuidas en la naturaleza y se hallan en la mayor parte de las muestras de suelos, agua y polvo. Ciertos miembros de dicho género han adquirido importancia como productores de antibióticos. (1)
Bacillus anthracis.
El carbunco (enfermedad de los animales herbívoros, ovinos y bovinos, equinos, porcinos y caprinos) es causado por el B. anthacis, un bacilo grampositivo aerobio y formador de esporas. Es un bacilo recto que mide de 3 a 5 micras de largo y de 1 a 1.2 micras de ancho, es inmóvil. Están encapsulados durante la proliferación en el animal infectado.
Características de su cultivo. Proliferan bien en placas con agar sangre. La proliferación máxima se obtiene con un pH de 7-7.4 en condiciones aerobias, pero se produce desarrollo en ausencia de oxígeno. Identificación de laboratorio. Ni los aspectos morfológicos ni las características de cultivo habituales permiten diferenciar al B. anthracis de las cepas inmóviles de B. cereus, el microorganismo con el que más fácilmente se confunde.
Sin embargo, las cepas virulentas de B. anthracis son los únicos microorganismos que producen colonias rugosas cuando proliferan en ausencia de un mayor nivel de CO2 y colonias mucoides cuando proliferan en un medio con bicarbonato de sodio en una atmósfera con un 5% de CO2. Los
seres humanos se infectan de una de tres formas:
1. La vía cutánea. Los microorganismos acceden a través de pequeñas abrasiones o cortes y se multiplican.
2. Inhalación. Los microorganismos son inhalados, se multiplican en los pulmones y son barridos hacia los ganglios linfáticos hiliares de drenaje, donde se rpoduce una necrosis hemorrágica.
3. Ingestión. Rara vez los microorganismos son ingeridos en carne infectada, con ella resultante invasión y ulceración de la mucosa gastrointestinal.
FICHA BIBLIOGRAFICA
http://fai.unne.edu.ar/biologia/bacterias/Bacteriasrelavantes.htm
TAREA # 6 frotis
FROTIS :
Se denomina frotis a la extensión que se realiza sobre un portaobjetos de una muestra o cultivo con objeto de separar lo más posible los microorganismos, ya que si aparecen agrupados en la preparación es muy difícil obtener una imagen clara y nítida. Este frotis debe ser posteriormente fijado al vidrio del portaobjetos para poder aplicar los métodos habituales de tinción que permiten la observación al microscopio de las bacterias sin que la muestra sea arrastrada en los sucesivos lavados. La fijación de una extensión bacteriana hace que las bacterias queden inactivadas y adheridas al vidrio alterando lo menos posible la morfología y bacteriana y las posibles agrupaciones de células que pudiera haber.
REALIZACIÓN DEL FROTIS
- Colocar una pequeña gota de agua en el centro de un portaobjetos limpio. Es necesaria muy poca cantidad de agua, por lo que se puede usar el asa de siembra, ya que en el extremo curvo de su filamento queda retenida una mínima gota de agua, que resulta suficiente.
- Flamear el asa de siembra, tomar, en condiciones asépticas, una pequeña cantidad del cultivo bacteriano en medio sólido y transferirlo a la gota de agua. Remover la mezcla con el asa de siembra hasta formar una suspensión homogénea que quede bastante extendida para facilitar su secado.
Si la muestra se toma de un cultivo en medio líquido, no es necesario realizar los dos primeros pasos ya que basta con colocar y extender una gota de la suspensión bacteriana, que se toma con el asa de siembra, directamente sobre el portaobjetos. - Esperar hasta que el líquido se evapore o acelerar su evaporación acercando el porta a la llama del mechero. En este caso hay que tener mucha precaución de no calentar demasiado el porta pues las células pueden deformarse o romperse.
FIJACIÓN DE LAS BACTERIAS AL PORTAOBJETOS
- Por calor: Pasar tres veces el portaobjetos por la llama durante unos segundos. Dejar enfriar el porta entre los pases.
- Con metanol (para bacterias procedentes de medio líquido). Añadir unas gotas de metanol sobre la extensión completamente seca. Golpear el portaobjetos por su canto con cuidado contra la mesa de trabajo para retirar de inmediato el exceso de metanol. Esperar a que el metanol se evapore completamente.
Una vez realizado el frotis y fijadas las bacterias, las preparaciones pueden ser observadas al microscopio, aunque carecen de contraste. Lo normal es continuar con el proceso de tinción.
TINCIÓN DEL FROTIS BACTERIANO
- Cubrir el frotis con abundante colorante y dejarlos actuar durante el tiempo que indique el protocolo de cada tinción concreta. Suele oscilar entre 1 y 5 minutos. En ocasiones el colorante tiñe sólo en caliente, por lo que el tiempo que dure su actuación se deberá sostener el portaobjetos con unas pinzas sobre la llama del mechero para que humee el colorante, pero teniendo mucho cuidado de que no llegue a hervir ya que se produciría la destrucción de las células.
- Lavar la preparación con agua para eliminar el colorante. Esta operación se realiza inclinando el portaobjetos y aplicando el chorro de agua en su parte superior de manera que resbale sobre el frotis, pero sin que vaya dirigido directamente sobre él, pues podría arrastrar parte del frotis consigo. Eliminar la máxima cantidad de agua de los portaobjetos golpeándolos por su canto con cuidado contra la superficie de la mesa de trabajo.
- Secar el porta presionando entre dos papeles de filtro, pero en ningún caso se debe frotar el porta.
- Observar la preparación al microscopio llegando hasta el máximo aumento. Si se quiere montar de forma definitiva no se debe usar ahora el aceite de inmersión.
MONTAJE DEFINITIVO DE LA PREPARACIÓN
La técnica siguiente es de aplicación para cualquier preparación microscópica que se desee montar de forma definitiva. Se anotará en un extremo del portaobjetos el contenido de la preparación, la fecha y, en su caso, el nombre del alumno.
10. Pasar sucesivamente los portaobjetos por las siguientes soluciones manteniéndolos un mínimo de 5 minutos en cada baño. La serie de alcoholes puede modificarse en función de la disponibilidad de los reactivos, pero el objetivo es que la preparación quede totalmente deshidratada. Escurrir bien el reactivo antes de introducirlo en el siguiente baño.
a. Alcohol de 70º
b. Alcohol de 95º c.
Acetona pura Acetona-xilol (1:1) Xilol
11.Montar la preparación. Emplear bálsamo de Canadá, euparal o algún medio de montaje sintético. Utilizar preferiblemente cubreobjetos de 22x22 mm.
FICHA BIBLIOGRAFICA
http://www.joseacortes.com/practicas/frotisbact.htm
miércoles, 13 de mayo de 2009
CLASE No. 3
8.-Agrutinacion
Materiales
1.- lamina de cristal para reacciones febriles
2.-tubo de ensaye con tapón rojo estéril
3.-palillos de madera
4.-torundas de algodón con alcohol
5.-centrifuga
6.-microscopio
7.-pipeta Pasteur con bulbo
8.-papel secante
9.-papel para vestir mesa de laboratorio
10.-torniquete
Reactivo
1.- febriclin
2.-paciente “sangre fresca”
3.-hoja de solicitud de examen
4.-hoja de laboratorio
5.-indicaciones del laboratorio al paciente
6.- folio de registro
Análisis
1.- técnica de extracción de sangre
2.-separacion de paquete sanguíneo y plasma
3.-punteo de plasma en placa de cristal
4.-mesclar plasma con reactivo de febriclin para observar la reacción de aglutinación
5.-observar microscópicamente el proceso de aglutinación en objetivo 10X y 40X
6.-reportar en hoja de laboratorio
Tífico H = + -
Tífico 0 = + -
Paratífico A= + -
Brucella abortus= + -
Proteus 0X19= +-
Materiales
1.- lamina de cristal para reacciones febriles
2.-tubo de ensaye con tapón rojo estéril
3.-palillos de madera
4.-torundas de algodón con alcohol
5.-centrifuga
6.-microscopio
7.-pipeta Pasteur con bulbo
8.-papel secante
9.-papel para vestir mesa de laboratorio
10.-torniquete
Reactivo
1.- febriclin
2.-paciente “sangre fresca”
3.-hoja de solicitud de examen
4.-hoja de laboratorio
5.-indicaciones del laboratorio al paciente
6.- folio de registro
Análisis
1.- técnica de extracción de sangre
2.-separacion de paquete sanguíneo y plasma
3.-punteo de plasma en placa de cristal
4.-mesclar plasma con reactivo de febriclin para observar la reacción de aglutinación
5.-observar microscópicamente el proceso de aglutinación en objetivo 10X y 40X
6.-reportar en hoja de laboratorio
Tífico H = + -
Tífico 0 = + -
Paratífico A= + -
Brucella abortus= + -
Proteus 0X19= +-
martes, 12 de mayo de 2009
Tarea #3 TINCION
Tinción:
Las tinciones se combinan químicamente con el protoplasma bacteriano; si la célula no ha muerto el proceso termina de hacerlo. El método, por consiguiente, es bastante drástico y puede producir artificios. Las tinciones mas frecuente son sales. Las tinciones básicas consiste en un catión coloreado unido a un anión incoloro, mientras las ácidas constituyen exactamente lo contrario, unido a dos cationes. Las células bacterianas son abundantes en ácidos nucleicos, los cuales portan cargas negativas en formas de fosfatos. Los colorantes ácidos no tiñen a las células bacterias, y por tanto, pueden utilizarse para teñir al fondo con un color de contraste. Las tinciones básicas tiñen uniformemente en las células bacterianas, a menos que antes de destruyan el ARN del citoplasma. También se pueden usar técnicas de tinción especiales para flagelos, membranas celulares, paredes celulares, gránulos, nucleótidos y esporas.
Clasificación de las tinciones:
La tinción de Gram o coloración Gram es un tipo de tinción diferencial empleado en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas. Debe su nombre al bacteriólogo danés Christian Gram, que desarrolló la técnica en 1884. Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose Bacteria Gram positiva a las bacterias que se visualizan de color violeta y Bacteria Gram negativa a las que se visualizan de color rosa. La tinción de Ziehl-Neelsen (BAAR) es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, para la identificación de mocroorganismos patógenos, por ejemplo M. tuberculosis. Este método se basa en que las paredes celulares de ciertos parásitos y bacterias contienen ácidos grasos (por ejemplo, el ácido micólico) de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que les confieren la propiedad de resistir la decoloración con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan bacilos ácido-alcohol resistentes o BAAR. Las micobacterias como M. tuberculosis y M. marinum y los parásitos coccídeos como Cryptosporidium se caracterizan por sus propiedades de ácido-alcohol resistencia. La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la pared bacteriana que contiene ceras. En una tinción directa el colorante interacciona directamente con el sustrato. En una tinción indirecta se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia química denominada "mordiente" con el sustrato la cual permite la posterior interacción del colorante. Usualmente los mordientes son sales, hidróxidos o alumbres de metales bivalentes o trivalentes.
Tinciones simples:
tinción negativa: se usa un colorante ácido, nigrosina o tinta china, que no entra en la célula de modo que estas no se observan teñidas, lo que se ve de color es el fondo Frotis. Secado al aire Colorante. Visionado a 100X .tinción básica: se usa azul de metileno que si tiñe a las células. Frotis. Fijación. Colorante. Lavado con agua destilada. Secado al aire.Visionado a 100X.
Tinciones diferenciales:
tinción Gram: se basa en las diferencias entre las paredes de las Gram + y las Gram - , el primer colorante tiñe todas las células, en las G+ entra y con la acción del lugol formara una molécula muy grande que no sale de la célula, pero el disolvente, etanol, disolverá la capa d lipopolisacaridos de las Gram negativas donde esta el 1º colorante, ya que no pudo atravesar esta barrera, de modo que al añadir el 2º será este el único que les de color. Extensión. Fijación. Colorante básico, cristal violeta, entra en las células. Lavado con agua destilada. Mordiente, lugol: el colorante básico ya no puede salir de G+. Lavado con etanol que disuelve la capa de lipopolisacaridos de G- donde esta el 1º colorante. Colorante de contraste básico, safranina o rojo metilo . que tiñe a las G-.
a) Azul de metileno (Tinción positiva).
Permite teñir el interior celular. Tiñe microorganismos procarióticos (vivos o muertos). Los eucarióticos sólo se tiñen si están muertos. Algunas estructuras, como los corpúsculos metacromáticos, se tiñen más intensamente con este colorante que el resto de la célula. El azul de metileno se usa como tintura para teñir ciertas partes del cuerpo antes o durante la cirugía. Su uso es principalmente como antiséptico y cicatrizador interno. También se utiliza como colorante en las tinciones para la observación en el microscopio.
Las tinciones se combinan químicamente con el protoplasma bacteriano; si la célula no ha muerto el proceso termina de hacerlo. El método, por consiguiente, es bastante drástico y puede producir artificios. Las tinciones mas frecuente son sales. Las tinciones básicas consiste en un catión coloreado unido a un anión incoloro, mientras las ácidas constituyen exactamente lo contrario, unido a dos cationes. Las células bacterianas son abundantes en ácidos nucleicos, los cuales portan cargas negativas en formas de fosfatos. Los colorantes ácidos no tiñen a las células bacterias, y por tanto, pueden utilizarse para teñir al fondo con un color de contraste. Las tinciones básicas tiñen uniformemente en las células bacterianas, a menos que antes de destruyan el ARN del citoplasma. También se pueden usar técnicas de tinción especiales para flagelos, membranas celulares, paredes celulares, gránulos, nucleótidos y esporas.
Clasificación de las tinciones:
La tinción de Gram o coloración Gram es un tipo de tinción diferencial empleado en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas. Debe su nombre al bacteriólogo danés Christian Gram, que desarrolló la técnica en 1884. Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose Bacteria Gram positiva a las bacterias que se visualizan de color violeta y Bacteria Gram negativa a las que se visualizan de color rosa. La tinción de Ziehl-Neelsen (BAAR) es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, para la identificación de mocroorganismos patógenos, por ejemplo M. tuberculosis. Este método se basa en que las paredes celulares de ciertos parásitos y bacterias contienen ácidos grasos (por ejemplo, el ácido micólico) de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que les confieren la propiedad de resistir la decoloración con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan bacilos ácido-alcohol resistentes o BAAR. Las micobacterias como M. tuberculosis y M. marinum y los parásitos coccídeos como Cryptosporidium se caracterizan por sus propiedades de ácido-alcohol resistencia. La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la pared bacteriana que contiene ceras. En una tinción directa el colorante interacciona directamente con el sustrato. En una tinción indirecta se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia química denominada "mordiente" con el sustrato la cual permite la posterior interacción del colorante. Usualmente los mordientes son sales, hidróxidos o alumbres de metales bivalentes o trivalentes.
Tinciones simples:
tinción negativa: se usa un colorante ácido, nigrosina o tinta china, que no entra en la célula de modo que estas no se observan teñidas, lo que se ve de color es el fondo Frotis. Secado al aire Colorante. Visionado a 100X .tinción básica: se usa azul de metileno que si tiñe a las células. Frotis. Fijación. Colorante. Lavado con agua destilada. Secado al aire.Visionado a 100X.
Tinciones diferenciales:
tinción Gram: se basa en las diferencias entre las paredes de las Gram + y las Gram - , el primer colorante tiñe todas las células, en las G+ entra y con la acción del lugol formara una molécula muy grande que no sale de la célula, pero el disolvente, etanol, disolverá la capa d lipopolisacaridos de las Gram negativas donde esta el 1º colorante, ya que no pudo atravesar esta barrera, de modo que al añadir el 2º será este el único que les de color. Extensión. Fijación. Colorante básico, cristal violeta, entra en las células. Lavado con agua destilada. Mordiente, lugol: el colorante básico ya no puede salir de G+. Lavado con etanol que disuelve la capa de lipopolisacaridos de G- donde esta el 1º colorante. Colorante de contraste básico, safranina o rojo metilo . que tiñe a las G-.
a) Azul de metileno (Tinción positiva).
Permite teñir el interior celular. Tiñe microorganismos procarióticos (vivos o muertos). Los eucarióticos sólo se tiñen si están muertos. Algunas estructuras, como los corpúsculos metacromáticos, se tiñen más intensamente con este colorante que el resto de la célula. El azul de metileno se usa como tintura para teñir ciertas partes del cuerpo antes o durante la cirugía. Su uso es principalmente como antiséptico y cicatrizador interno. También se utiliza como colorante en las tinciones para la observación en el microscopio.
Tarea #2 Medio de Cultivo
MEDIO DE CULTIVO
Uno de los sistemas más importantes para la identificación de microorganismos es observar su crecimiento en sustancias alimenticias artificiales preparadas en el laboratorio. El material alimenticio en el que crecen los microorganismos es el Medio de Cultivo y el crecimiento de los microorganismos es el Cultivo. Se han preparado más de 10.000 medios de cultivo diferentes. Para que las bacterias crezcan adecuadamente en un medio de cultivo artificial debe reunir una serie de condiciones como son: temperatura, grado de humedad y presión de oxígeno adecuado, así como un grado correcto de acidez o alcalinidad. Un medio de cultivo debe contener los nutrientes y factores de crecimiento necesarios y debe estar exento de todo microorganismo contaminante. La mayoría de las bacterias patógenas requieren nutrientes complejos similares en composición a los líquidos orgánicos del cuerpo humano. Por eso, la base de muchos medios de cultivo es una infusión de extractos de carne y Peptona a la que se añadirán otros ingredientes. El agar es un elemento solidificante muy empleado para la preparación de medios de cultivo. Se licua completamente a la temperatura del agua hirviendo y se solidifica al enfriarse a 40 grados. Con mínimas excepciones no tiene efecto sobre el crecimiento de las bacterias y no es atacado por aquellas que crecen en él. La Gelatina es otro agente solidificante pero se emplea mucho menos ya que bastantes bacterias provocan su licuación.
SIEMBRA
Sembrar es introducir artificialmente una porción de muestra en un medio adecuado, con el fin de iniciar un cultivo microbiano. Luego de sembrado, el medio de cultivo se incuba a una temperatura adecuada para el crecimiento.
La siembra puede realizarse en medio líquido, sólido o semisólido, utilizando punta, ansa, hisopo o pipeta estéril.
Cultivo en medio líquido Se realiza en tubos o en matraces. El crecimiento se puede manifestar por enturbiamiento, por formación de velo o película, o por sedimento.
Cultivo en medio sólido
Puede ser en tubos o placas.
a) Tubos con agar inclinado. Para sembrarlos, se mueve el ansa o la punta suavemente sobre la superficie del agar con un movimiento en zigzag desde el fondo hasta la parte superior, cuidando de no dañar el agar. b) Tubos sin inclinar. Se siembran introduciendo una punta en el centro del agar. También se llama siembra por picadura. c) Siembra en placas. Puede ser en superficie o incorporada.
CLASIFICACIÓN DE LOS MEDIOS DE CULTIVO
MEDIOS ENRIQUECIDOS
Algunos microorganismos no son capaces de desarrollarse en medios de cultivo normales. Para cultivarlos necesitamos añadir sustancias altamente nutritivas como sangre, suero, extractos de tejidos animales. MEDIOS SELECTIVOS Contienen uno o varios compuestos que inhiben el crecimiento de un determinado tipo de microorganismos y no afectan a otros tipos. Otra manera es modificar la fuente de carbono; si sustituimos la glucosa por maltosa, seleccionamos aquellos microorganismos capaces de digerirla. MEDIOS DIFERENCIALES Contienen distintos compuestos químicos o indicadores sobre los que determinados microorganismos adquiere coloraciones específicas o reaccionan de una manera determinada. MEDIOS SELECTIVOS Y DIFERENCIALES Se usa para detectar E. Coli y Salmonella. E. Coli es tolerante a la lactosa. Al digerirla, libera ácidos, por lo que se crea un medio ácido y el indicador se pone rojo. Salmonella no tolera la lactosa, por lo que no formará ácidos y formará colonias incoloras. CULTIVOS PUROS: MEDIOS DE OBTENCIÓN Los microorganismos en estado natural crecen de forma heterogénea o mixta. Cuando queremos estudiar un microorganismo dado, debemos aislarlo. Un cultivo puro es aquel que contiene un solo tipo de microorganismo.
Tinción:
Uno de los sistemas más importantes para la identificación de microorganismos es observar su crecimiento en sustancias alimenticias artificiales preparadas en el laboratorio. El material alimenticio en el que crecen los microorganismos es el Medio de Cultivo y el crecimiento de los microorganismos es el Cultivo. Se han preparado más de 10.000 medios de cultivo diferentes. Para que las bacterias crezcan adecuadamente en un medio de cultivo artificial debe reunir una serie de condiciones como son: temperatura, grado de humedad y presión de oxígeno adecuado, así como un grado correcto de acidez o alcalinidad. Un medio de cultivo debe contener los nutrientes y factores de crecimiento necesarios y debe estar exento de todo microorganismo contaminante. La mayoría de las bacterias patógenas requieren nutrientes complejos similares en composición a los líquidos orgánicos del cuerpo humano. Por eso, la base de muchos medios de cultivo es una infusión de extractos de carne y Peptona a la que se añadirán otros ingredientes. El agar es un elemento solidificante muy empleado para la preparación de medios de cultivo. Se licua completamente a la temperatura del agua hirviendo y se solidifica al enfriarse a 40 grados. Con mínimas excepciones no tiene efecto sobre el crecimiento de las bacterias y no es atacado por aquellas que crecen en él. La Gelatina es otro agente solidificante pero se emplea mucho menos ya que bastantes bacterias provocan su licuación.
SIEMBRA
Sembrar es introducir artificialmente una porción de muestra en un medio adecuado, con el fin de iniciar un cultivo microbiano. Luego de sembrado, el medio de cultivo se incuba a una temperatura adecuada para el crecimiento.
La siembra puede realizarse en medio líquido, sólido o semisólido, utilizando punta, ansa, hisopo o pipeta estéril.
Cultivo en medio líquido Se realiza en tubos o en matraces. El crecimiento se puede manifestar por enturbiamiento, por formación de velo o película, o por sedimento.
Cultivo en medio sólido
Puede ser en tubos o placas.
a) Tubos con agar inclinado. Para sembrarlos, se mueve el ansa o la punta suavemente sobre la superficie del agar con un movimiento en zigzag desde el fondo hasta la parte superior, cuidando de no dañar el agar. b) Tubos sin inclinar. Se siembran introduciendo una punta en el centro del agar. También se llama siembra por picadura. c) Siembra en placas. Puede ser en superficie o incorporada.
CLASIFICACIÓN DE LOS MEDIOS DE CULTIVO
MEDIOS ENRIQUECIDOS
Algunos microorganismos no son capaces de desarrollarse en medios de cultivo normales. Para cultivarlos necesitamos añadir sustancias altamente nutritivas como sangre, suero, extractos de tejidos animales. MEDIOS SELECTIVOS Contienen uno o varios compuestos que inhiben el crecimiento de un determinado tipo de microorganismos y no afectan a otros tipos. Otra manera es modificar la fuente de carbono; si sustituimos la glucosa por maltosa, seleccionamos aquellos microorganismos capaces de digerirla. MEDIOS DIFERENCIALES Contienen distintos compuestos químicos o indicadores sobre los que determinados microorganismos adquiere coloraciones específicas o reaccionan de una manera determinada. MEDIOS SELECTIVOS Y DIFERENCIALES Se usa para detectar E. Coli y Salmonella. E. Coli es tolerante a la lactosa. Al digerirla, libera ácidos, por lo que se crea un medio ácido y el indicador se pone rojo. Salmonella no tolera la lactosa, por lo que no formará ácidos y formará colonias incoloras. CULTIVOS PUROS: MEDIOS DE OBTENCIÓN Los microorganismos en estado natural crecen de forma heterogénea o mixta. Cuando queremos estudiar un microorganismo dado, debemos aislarlo. Un cultivo puro es aquel que contiene un solo tipo de microorganismo.
Tinción:
Tarea #1 caracteristicas de paranecium 3ER. PARCIAL
Paramecium
Los paramecios (género Paramecium) son protozoos ciliados con forma de suela de zapato o elipsoide, habituales en aguas dulces estancadas con abundante materia orgánica, como charcos y estanques. Son probablemente los seres unicelulares mejor conocidos y los protozoos ciliados más estudiados por la Ciencia. El tamaño ordinario de todas las especies de paramecios es de apenas 0'05 milímetros. Carecen de flagelos, pero los cilios son muy abundantes y recubren toda su superficie. A ellos les corresponde proporcionar movimiento al organismo. La membrana externa absorbe y expulsa regularmente el agua del exterior con el fin de controlar la osmorregulación, proceso dirigido por dos vacuolas contráctiles. En su anatomía destaca el citostoma, una especie de invaginación situada a todo lo largo del paramecio de la que éste se sirve para capturar el alimento, conformado por partículas orgánicas flotantes y microorganismos menores. El citostoma conduce a una citofaringe antes de que el alimento pase al interior de este protozoo. Otros orgánulos de fácil observación son el núcleo eucariota, situado junto a un "micronúcleo" en el centro del paramecio, y las vacuolas digestivas, que digieren constantemente el alimento capturado. Los desechos se expulsan por exocitosis, mediante vacuolas de secreción que se originan a partir de las digestivas. Como muchos otros microorganismos, los paramecios se reproducen asexualmente por fisión binaria.Se trata de un protozoo minúsculo con forma de zapatilla que abunda en lagos, estanques y charcos. Se mueve constantemente, para lo cual se sirve de innumerables hebras microscópicos llamados cilios, con los que golpea el agua a modo de remos. Los paramecios se alimentan de bacterias y otros organismos microscópicos. Para atrapar su alimento, utilizan una boca en forma de ranura.
Escherichia coli
Las bacterias del género E. coli son Gram-negativas, tienen forma de barra y pertenecen a la familia Enterobacteriaceae. Esta bacteria es un habitante común de los intestinos de todos los animales, incluyendo el de los humanos. Cuando se usan métodos de cultivos aeróbicos, esta bacteria es la especie dominante encontrada en las heces. Normalmente cumple una función importante en el cuerpo, suprimiendo el crecimiento de especies dañinas de bacterias así como también sintetizando cantidades apreciables de vitaminas. Son pocas las cepas de E. coli capaces de causar enfermedades a los humanos a través de diferentes mecanismos. Entre ellas están las cepas enteroinvasivas (EIEC) responsables de una forma de la disentería bacilar. No obstante, es desconocido aún el tipo de alimentos que pueden hospedar a estas bacterias patogénicas.
Salmonella typhy
con forma de barra, no espongiforme y Gram negativa,. Está presente muy frecuentemente en los animales, especialmente en las aves y los porcinos. Entre las fuentes ambientales de este organismo se incluyen el agua, el suelo, los insectos, las superficies de las fábricas, las superficies de las cocinas, las heces fecales de los animales, las carnes crudas, el pollo crudo, los productos marinos crudos, entre otros.
Proteus
Las especies de Rickettisias que causan tifo tienen componentes antigénos idiotípicos con Proteus ( OX-19, OX-2 OX-K), esta relación se usó en el diagnóstico de tifo. Las especies de Rickettsia son cocobaciolos pequeños plemórfos que funcionan como parásitos intracelulares. La inmunidad por lo general es de larga duración, con algunas excepciones. El tifus endémico puede causar recaíadas 10 o 20 años después de la aparente recuperación (enfermedad de Grill Zinseer). La fiebre de las trincheras se caracteriza por las recaídas.
brucella abortus
B. abortus es una bacteria Gram negativa con un lipopolisacárido (LPS) fuertemente inmunodominante, el que junto con la capacidad de sobrevivir en el interior de células fagocíticas constituyen sus principales factores de virulencia. La infección en humanos conduce a una enfermedad con tendencia a la cronicidad, con fiebre y malestar recurrentes que deterioran su calidad de vida y que además puede presentar complicaciones como artritis, meningitis, entre otras.
Los paramecios (género Paramecium) son protozoos ciliados con forma de suela de zapato o elipsoide, habituales en aguas dulces estancadas con abundante materia orgánica, como charcos y estanques. Son probablemente los seres unicelulares mejor conocidos y los protozoos ciliados más estudiados por la Ciencia. El tamaño ordinario de todas las especies de paramecios es de apenas 0'05 milímetros. Carecen de flagelos, pero los cilios son muy abundantes y recubren toda su superficie. A ellos les corresponde proporcionar movimiento al organismo. La membrana externa absorbe y expulsa regularmente el agua del exterior con el fin de controlar la osmorregulación, proceso dirigido por dos vacuolas contráctiles. En su anatomía destaca el citostoma, una especie de invaginación situada a todo lo largo del paramecio de la que éste se sirve para capturar el alimento, conformado por partículas orgánicas flotantes y microorganismos menores. El citostoma conduce a una citofaringe antes de que el alimento pase al interior de este protozoo. Otros orgánulos de fácil observación son el núcleo eucariota, situado junto a un "micronúcleo" en el centro del paramecio, y las vacuolas digestivas, que digieren constantemente el alimento capturado. Los desechos se expulsan por exocitosis, mediante vacuolas de secreción que se originan a partir de las digestivas. Como muchos otros microorganismos, los paramecios se reproducen asexualmente por fisión binaria.Se trata de un protozoo minúsculo con forma de zapatilla que abunda en lagos, estanques y charcos. Se mueve constantemente, para lo cual se sirve de innumerables hebras microscópicos llamados cilios, con los que golpea el agua a modo de remos. Los paramecios se alimentan de bacterias y otros organismos microscópicos. Para atrapar su alimento, utilizan una boca en forma de ranura.
Escherichia coli
Las bacterias del género E. coli son Gram-negativas, tienen forma de barra y pertenecen a la familia Enterobacteriaceae. Esta bacteria es un habitante común de los intestinos de todos los animales, incluyendo el de los humanos. Cuando se usan métodos de cultivos aeróbicos, esta bacteria es la especie dominante encontrada en las heces. Normalmente cumple una función importante en el cuerpo, suprimiendo el crecimiento de especies dañinas de bacterias así como también sintetizando cantidades apreciables de vitaminas. Son pocas las cepas de E. coli capaces de causar enfermedades a los humanos a través de diferentes mecanismos. Entre ellas están las cepas enteroinvasivas (EIEC) responsables de una forma de la disentería bacilar. No obstante, es desconocido aún el tipo de alimentos que pueden hospedar a estas bacterias patogénicas.
Salmonella typhy
con forma de barra, no espongiforme y Gram negativa,. Está presente muy frecuentemente en los animales, especialmente en las aves y los porcinos. Entre las fuentes ambientales de este organismo se incluyen el agua, el suelo, los insectos, las superficies de las fábricas, las superficies de las cocinas, las heces fecales de los animales, las carnes crudas, el pollo crudo, los productos marinos crudos, entre otros.
Proteus
Las especies de Rickettisias que causan tifo tienen componentes antigénos idiotípicos con Proteus ( OX-19, OX-2 OX-K), esta relación se usó en el diagnóstico de tifo. Las especies de Rickettsia son cocobaciolos pequeños plemórfos que funcionan como parásitos intracelulares. La inmunidad por lo general es de larga duración, con algunas excepciones. El tifus endémico puede causar recaíadas 10 o 20 años después de la aparente recuperación (enfermedad de Grill Zinseer). La fiebre de las trincheras se caracteriza por las recaídas.
brucella abortus
B. abortus es una bacteria Gram negativa con un lipopolisacárido (LPS) fuertemente inmunodominante, el que junto con la capacidad de sobrevivir en el interior de células fagocíticas constituyen sus principales factores de virulencia. La infección en humanos conduce a una enfermedad con tendencia a la cronicidad, con fiebre y malestar recurrentes que deterioran su calidad de vida y que además puede presentar complicaciones como artritis, meningitis, entre otras.
jueves, 7 de mayo de 2009
Tarea #10
Cuestionario: 1 Segunda unidad .
1.- Es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués que se llama:
2.- En qué año se le atribuye el pie de rey al cosmógrafo y matemático portugués.
3.- También se ha llamado pie de rey al:
4.- En que año se le atribuye el pie de rey al geómetra pedro Vernier.
5.- ¿Qué otro nombre recibe el origen del pie de rey?
:::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::
En los recuadros siguientes ponga el número y nombre correspondiente de la figura de medición
Descripción del Pie de Rey o Vernier. 121 palabras utilizaras para su descripción.
Consta de una "regla" con una escuadra en un extremo, sobre la cual se desliza otra destinada a indicar la medida en una escala. Permite apreciar longitudes de 1/10, 1/20 y 1/50 de milímetro utilizando el nonio. Mediante piezas especiales en la parte superior y en su extremo, permite medir dimensiones internas y profundidades. Posee dos escalas: la inferior milimétrica y la superior en pulgadas. Mordazas para medidas externas. Mordazas para medidas internas. Coliza para medida de profundidades. Escala con divisiones en centímetros y milímetros. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido. Botón de deslizamiento y freno.
1.- Es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués que se llama:
2.- En qué año se le atribuye el pie de rey al cosmógrafo y matemático portugués.
3.- También se ha llamado pie de rey al:
4.- En que año se le atribuye el pie de rey al geómetra pedro Vernier.
5.- ¿Qué otro nombre recibe el origen del pie de rey?
:::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::
En los recuadros siguientes ponga el número y nombre correspondiente de la figura de medición
- 1. Mordazas para medidas exteriores .
- 2. Mordazas para medidas interiores .
- 3. Coliza para medida de profundidades .
- 4. Escala con divisiones en centímetros y milímetros .
- 5. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada .
- 6. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido.
- 7. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido .
- 8. Botón de deslizamiento y freno .
Descripción del Pie de Rey o Vernier. 121 palabras utilizaras para su descripción.
Consta de una "regla" con una escuadra en un extremo, sobre la cual se desliza otra destinada a indicar la medida en una escala. Permite apreciar longitudes de 1/10, 1/20 y 1/50 de milímetro utilizando el nonio. Mediante piezas especiales en la parte superior y en su extremo, permite medir dimensiones internas y profundidades. Posee dos escalas: la inferior milimétrica y la superior en pulgadas. Mordazas para medidas externas. Mordazas para medidas internas. Coliza para medida de profundidades. Escala con divisiones en centímetros y milímetros. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido. Botón de deslizamiento y freno.
REPOR DE DE PRACTI CA No.3
OBJETIVO
Manejar y saber utilizar las pipetas. Pipetear cada una de las diferentes pipetas, jugamos a pipetear pero más que un juego, logramos manejar y pipetear las pipetas al agua. Me gusto, comprendí y logre pipetear
INTRODUCCION
Colocamos cada material en la mesa y empezamos a pipetear, fuimos paso a paso , primero empezamos a pipetear la pipeta de 5 a 10 (mililitros) después la pipeta de Pasteur., también utilizamos la caja de petri, para colocar una gota de agua. Después utilizamos la pipeta de 10 a 100 (mililitros)
INDICE
1. Objetivo…..
2. Introducción…..
3. Marco teórico…..
4. Conclusión…..
5. Bitácora…..
1. Objetivo…..
2. Introducción…..
3. Marco teórico…..
4. Conclusión…..
5. Bitácora…..
MARCO TEORICO
Lo primero que hicimos fue ponernos nuestro equipo de bioseguridad, a casa mesa se le dio unas pipetas- pipeta de Pasteur , caja de petri, probeta, matraz, flemeyer tuvimos que saber manejar las pipetas , cada miembro de la mesa, pipeteo con cada unas de las pipetas. . Pipeteamos una cierta cantidad que al pasar a la probeta. Llegaba exactamente a 10 Mm. todos aprendimos a utilizar las pipetas. Pipeta de Pasteur. Tuvimos que pasar a la caja de petri un agota de agua
CONCLUSION
Creo que estubo muy divertida la practica. Aprendimos a utilizarlas y amanejarlas con mucho cuidado ya que son instrumentos muy valiosos y necesarios para el laboratorio clínico y a algunos compañeros tuvieron unos problemas ya que al estar pipeteando y despues comprobar con la probeta graduada no nos daba la cantidad que queriamos y unos de mis compañeros al estar pipeteando se tomaron un poco de agua
BITACORA
Ponernos equipo de bioseguridad: 10 Mm.
Realizar la practica: 40 Mm.
recoger el material: 10 Mm.
REPORTE DE PRACTICA No. 1
OBJETIVO
El objetivo principal de la practica es tener bajo control el enfoque en el microscopio, durante la practica se debe observar la muestra o lo que se desee observar por medio de los oculares.
Con los tornillos macro métrico y micrométrico ajustar a un nivel en el cual se pueda ver en un nivel claramente la estructura.
INTRODUCCION
En el siguiente reporte se presentan las estructuras de las células vegetales; por medio de la enfocacion por un microscopio.
Durante la práctica se sigue un reglamento para la perfecta enfocacion de la muestra. En este cao son vegetales; la estructura varia de acuerdo al tipo de células y la forma de cada uno (tomate, cebolla y lechuga)
INDICE
1. Objetivo.....
2. Introducción…..
3. Marco teórico…..
4. Conclusión…..
5. Bitácora….
MARCO TEORICO
“Enfocacion en microscopio células vegetales “
(Tomate, cebollas y lechuga)
El enfoque consiste en acercar lo mas posible la platina a los objetivo para poder observar microscópicamente y con claridad la estructura de las células en los vegetales.
Este método consiste en acércanos a los oculares y con ayuda de los tornillos macro métrico y micrométrico, ajustarlos de una forma que se pueda observar bien clara la estructura celular de cada muestra que se ocupe.
En tal caso se observaron células vegetales; que forman parte de los tejidos y órganos del mismo. Su pared celular es rígida, lo que determina las formas geométricas que se encuentran en los tejidos vegetales como hexagonales observando en las células
Los vegetales que e observaron fueron el tomate. Cebolla y la lechuga, las cuales como ya se menciono tienen estructuras muy diferentes.
CONCLUSION:
Como conclusión se puede decir que la enfocacion el poder enfocar es algo muy básico y fundamental para cualquier observación lógicamente.
Las estructuras de los vegetales son diferentes a pesar de ser del mismo tipo de células
BITACORA
Tomar el material :10
Enfocar microscopio : 50
Enfocar muestra de lechuga: 8
Enfocar muestra de tomate: 2
Enfocar muestra de cebolla : 3
Limpiaar el equipo : 5
El objetivo principal de la practica es tener bajo control el enfoque en el microscopio, durante la practica se debe observar la muestra o lo que se desee observar por medio de los oculares.
Con los tornillos macro métrico y micrométrico ajustar a un nivel en el cual se pueda ver en un nivel claramente la estructura.
INTRODUCCION
En el siguiente reporte se presentan las estructuras de las células vegetales; por medio de la enfocacion por un microscopio.
Durante la práctica se sigue un reglamento para la perfecta enfocacion de la muestra. En este cao son vegetales; la estructura varia de acuerdo al tipo de células y la forma de cada uno (tomate, cebolla y lechuga)
INDICE
1. Objetivo.....
2. Introducción…..
3. Marco teórico…..
4. Conclusión…..
5. Bitácora….
MARCO TEORICO
“Enfocacion en microscopio células vegetales “
(Tomate, cebollas y lechuga)
El enfoque consiste en acercar lo mas posible la platina a los objetivo para poder observar microscópicamente y con claridad la estructura de las células en los vegetales.
Este método consiste en acércanos a los oculares y con ayuda de los tornillos macro métrico y micrométrico, ajustarlos de una forma que se pueda observar bien clara la estructura celular de cada muestra que se ocupe.
En tal caso se observaron células vegetales; que forman parte de los tejidos y órganos del mismo. Su pared celular es rígida, lo que determina las formas geométricas que se encuentran en los tejidos vegetales como hexagonales observando en las células
Los vegetales que e observaron fueron el tomate. Cebolla y la lechuga, las cuales como ya se menciono tienen estructuras muy diferentes.
CONCLUSION:
Como conclusión se puede decir que la enfocacion el poder enfocar es algo muy básico y fundamental para cualquier observación lógicamente.
Las estructuras de los vegetales son diferentes a pesar de ser del mismo tipo de células
BITACORA
Tomar el material :10
Enfocar microscopio : 50
Enfocar muestra de lechuga: 8
Enfocar muestra de tomate: 2
Enfocar muestra de cebolla : 3
Limpiaar el equipo : 5
REPORTE DE PRACTICA No. 2
OBJETIVO
El objetivo principal de la práctica de pesos y medidas es aprender a pesar con la balanza granatoria, sacar el peso de ciertas sustancias.
Conocer las capacidades volumétricas de los materiales de laboratorio, su uso y función checar cuanta capacidad se tienen en cada uno para sustancias solidas y liquidas.
INTRODUCCION
En el reporte se presenta algunos datos de la práctica de pesos y medidas. Durante la practica se sigue una serie de instrucciones y se van pesando material por material calculando la capacidad de cada uno con cada sustancia, ya sea solida o liquida.
INDICE
1. Objetivo…..
2. Introducción….
3. Marco teórico…..
4. Conclusión…..
5. Bitácora…..
MARCO TEORICO
“PESOS Y MEDIDAS”
Como el nombre lo dice, en la practica se baso en sacar el peso de todos los materiales de laboratorio clínico utilizados el peso es la medida de fuerza que ejerce la gravedad sobre la masa de un cuerpo. En este caso el peso de cada material. La medida es una función que asigna un numero, es decir un tamaño, un volumen o una probabilidad.
Así el peso y medida sacado fue a los siguientes materiales: vaso de precipitados, cristalizador, probeta graduada, pipeta volumétrica y graduada, pipeta Pasteur, vidrio de reloj, espátula, pipeta de Saly, caja de petri.
Al principio se pesaron y sacaron medidas solas, después se pesaron y midieron con sal y otras sustancias, dándonos cuenta del peso de la sustancia comparado con el del material solo. Fueron pesados en una balanza granataria.
CONCLUSION
Como conclusión de práctica resulto que existe una gran diferencia entre pesos y medidas, aunque se piensa que es lo mismo, no lo es, son dos cosas muy diferentes. Por que el peso es medido para masa y se representa en gr, kilogramos etc. Y la medida es basada en el volumen litros, mililitros, etc.
Y cada material de laboratorio tiene diferente capacidad en medida para contener una sustancia. Liquida o solida siempre cambia.
BITACORA
Actividad
Minutos
Ponernos equipo de bioseguridad
15
Recoger Material Necesarios para la practica
10
Pesar y Medir Material de Laboratorio
1hr con 30 min.
El objetivo principal de la práctica de pesos y medidas es aprender a pesar con la balanza granatoria, sacar el peso de ciertas sustancias.
Conocer las capacidades volumétricas de los materiales de laboratorio, su uso y función checar cuanta capacidad se tienen en cada uno para sustancias solidas y liquidas.
INTRODUCCION
En el reporte se presenta algunos datos de la práctica de pesos y medidas. Durante la practica se sigue una serie de instrucciones y se van pesando material por material calculando la capacidad de cada uno con cada sustancia, ya sea solida o liquida.
INDICE
1. Objetivo…..
2. Introducción….
3. Marco teórico…..
4. Conclusión…..
5. Bitácora…..
MARCO TEORICO
“PESOS Y MEDIDAS”
Como el nombre lo dice, en la practica se baso en sacar el peso de todos los materiales de laboratorio clínico utilizados el peso es la medida de fuerza que ejerce la gravedad sobre la masa de un cuerpo. En este caso el peso de cada material. La medida es una función que asigna un numero, es decir un tamaño, un volumen o una probabilidad.
Así el peso y medida sacado fue a los siguientes materiales: vaso de precipitados, cristalizador, probeta graduada, pipeta volumétrica y graduada, pipeta Pasteur, vidrio de reloj, espátula, pipeta de Saly, caja de petri.
Al principio se pesaron y sacaron medidas solas, después se pesaron y midieron con sal y otras sustancias, dándonos cuenta del peso de la sustancia comparado con el del material solo. Fueron pesados en una balanza granataria.
CONCLUSION
Como conclusión de práctica resulto que existe una gran diferencia entre pesos y medidas, aunque se piensa que es lo mismo, no lo es, son dos cosas muy diferentes. Por que el peso es medido para masa y se representa en gr, kilogramos etc. Y la medida es basada en el volumen litros, mililitros, etc.
Y cada material de laboratorio tiene diferente capacidad en medida para contener una sustancia. Liquida o solida siempre cambia.
BITACORA
Actividad
Minutos
Ponernos equipo de bioseguridad
15
Recoger Material Necesarios para la practica
10
Pesar y Medir Material de Laboratorio
1hr con 30 min.
Tarea#2 Las Celulas Vegetales
Células vegetales
Estas forman parte de los tejidos y órganos vegetales.la presencia de los cloroplastos, de grandes vacuolas y de una pared celular que protege la membrana celular.
La membrana celular es rígida, lo que determina las formas geométricas que encontramos en los tejidos vegetales, como el hexagonal observado en las células de la cubierta de la tela de la cebolla.
Células de la cebolla
Células de epidermis de la cebolla; son células eucariotas pluricelulares vegetales; son de forma alargada y bastante grandes.la membrana celular celulósica se destaca muy clara, teñida por el colorante. Los núcleos son grandes y visibles, en el interior de los mismos se puede llegar a percibir granulaciones, son los nucléolos. El citoplasma tiene aspecto bastante claro, en el se distinguen algunas vacuolas grandes, débilmente coloreadas; en algunas ocasiones se observa que la preparación tiene a manera de mosaico otros extractos de células que proceden de las capas mas internas que fácilmente han podido ser arrancadas al desprenderse la epidermis.
Células del tomate
Durante la observación en el microscopio y mediante una aguja histológica un fragmento de la parte interna del tomate, en la zona donde el tejido es compacto, se deposita este sobre un porta y presionando suavemente sobre el cubre se observan grandes células esféricas u ovoides en cuyo citoplasma pueden verse granulaciones anaranjadas que son los cromoplastos.
Pueden verse también grandes vacuolas incoloras en células menos alteradas así como el núcleo.
Células de la lechuga
Las estomas poseen cloroplastos, estas se encuentran sobretodo en las partes aéreas del vegetal y especialmente en hojas, tallos normales y rizomas. Las células epidérmicas cubren las estructuras primarias dela planta. Su estructura es aplanada, con formas a menudo irregulares, interdigitadas, otras veces con formas mas regulares poligonales, sobre todo hexágonos.
Estas forman parte de los tejidos y órganos vegetales.la presencia de los cloroplastos, de grandes vacuolas y de una pared celular que protege la membrana celular.
La membrana celular es rígida, lo que determina las formas geométricas que encontramos en los tejidos vegetales, como el hexagonal observado en las células de la cubierta de la tela de la cebolla.
Células de la cebolla
Células de epidermis de la cebolla; son células eucariotas pluricelulares vegetales; son de forma alargada y bastante grandes.la membrana celular celulósica se destaca muy clara, teñida por el colorante. Los núcleos son grandes y visibles, en el interior de los mismos se puede llegar a percibir granulaciones, son los nucléolos. El citoplasma tiene aspecto bastante claro, en el se distinguen algunas vacuolas grandes, débilmente coloreadas; en algunas ocasiones se observa que la preparación tiene a manera de mosaico otros extractos de células que proceden de las capas mas internas que fácilmente han podido ser arrancadas al desprenderse la epidermis.
Células del tomate
Durante la observación en el microscopio y mediante una aguja histológica un fragmento de la parte interna del tomate, en la zona donde el tejido es compacto, se deposita este sobre un porta y presionando suavemente sobre el cubre se observan grandes células esféricas u ovoides en cuyo citoplasma pueden verse granulaciones anaranjadas que son los cromoplastos.
Pueden verse también grandes vacuolas incoloras en células menos alteradas así como el núcleo.
Células de la lechuga
Las estomas poseen cloroplastos, estas se encuentran sobretodo en las partes aéreas del vegetal y especialmente en hojas, tallos normales y rizomas. Las células epidérmicas cubren las estructuras primarias dela planta. Su estructura es aplanada, con formas a menudo irregulares, interdigitadas, otras veces con formas mas regulares poligonales, sobre todo hexágonos.
Suscribirse a:
Entradas (Atom)